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恒丰娱乐g22请问有谁知道核酸引物和探针P原位杂交技术多少钱AGE纯化的步骤??


来源:乐橙娱乐官网 | 时间:2018-10-06

  人和哺乳动物细胞基因组DNA的分离通常是在有EDTA、Sarkosye等一类去污剂存在下,用蛋白酶K消化细胞,随后用酚、氯仿抽提,经RNase处理和纯化来提取DNA,可用于细胞凋亡中对所引起DNA断裂、凝胶电泳呈现“梯形”条带的实验,在细胞凋亡章节中已介绍了有关DNA的提取和凝胶电泳鉴定,除此之外,提取纯化的DNA还可用于分析其结构,序列限制性内切酶片断长度多态性及其基因定位和克隆。

  (1)取单层细胞,经无钙、镁PBS洗一次,用0.25%胰蛋白酶消化,细胞悬液经PBS洗2次,弃上清,取细胞沉淀。

  (3)50℃水浴2小时,转入37℃水浴过夜,次日加入等体积的饱和酚,轻轻颠倒混匀,以防止DNA断裂,约3分钟。

  (7)取水相,加入2倍体积的预冷无水乙醇,沉淀DNA,混匀-20℃放置1小时

  (8)用70%乙醇洗涤一次,按上法离心将沉淀线)加入RNase A至终浓度100mg/L,37℃水浴消化1小时,消化污染的RNA。

  DNA浓度用紫外分光光度计测定,核酸的光吸收值位于波长260nm处,蛋白质则位于280nm,分别测定后,其OD260/OD280的比值应大于1.75.低于此值,说明DNA中仍残留较多的蛋白质,此时可用酚、氯仿继续抽提纯化。若比值大于1.9表明DNA链破坏,断裂严重,已成为小分子,因此操作应轻柔。

  取少许DNA溶液,经紫外线扫描,吸收峰值位于波长260nm处,其纯度应为OD260/OD280=1.8

  DNA分子量大小测定,可用含溴化乙锭的1%琼脂凝胶电泳法测定,根据加入标准品片断的电泳迁移距离计算样品片断分子量大小,此技术还可用作分离基因组DNA,进一步进行Southern吸印分析。

  细胞中含有三类RNA即rRNA、mRNA和tRNA,其中mRNA传递蛋白质全部遗传信息是克隆表达功能性蛋白基因的最佳来源,是蛋白质合成的场所,有特殊意义,不同的细胞所表达某种蛋白的mRNA的种类和产量是不同的,为了提高细胞转录的mRNA的种类和产量,通常需加入诱导剂来对细胞进行刺激培养,如抗原、病毒、PHA、ConA、LPS等。

  提取细胞总RNA的方法,常用强烈变性剂如盐酸胍溶液处理细胞,我们在细胞凋亡的bcl-2基因的RT-PCR法基因克隆中介绍了异硫氰酸胍一步法,但不纯,本文介绍用盐酸胍来裂解细胞可导致细胞结构破坏,核蛋白二级结构破坏,可利于提取总RNA,也可从总RNA中提取mRNA,从而分析mRNA表达量,建立cDNA文库,以及对mRNA的调控和进行反义RNA研究。

  水平衡酚:在饱和酚中加入等体积DEPC处理的三蒸水(或新鲜无菌的三蒸水)混匀后去除水相,再重复处理二次即可。

  所用玻璃、塑料制品、金属器材可用0.1% DEPC水浸泡过夜后消毒无菌,其中玻璃、金属器材也可用180℃干烤6小时,以去除被污染的RNA酶。

  4、取水相,加入等体积酚/氯仿(1:1)混匀,剧烈振荡10分钟,4℃12000rpm离心15分钟。

  5、取水相,加入等体积氯仿,剧烈振荡10分钟,再同上离心,再如此反复抽提一次后取水相,加入等体积的预冷的异丙醇(或异戊醇)混匀,低温放置20分钟,再同上离心。

  6、取沉淀用70%预冷乙醇洗两次,干燥10分钟,溶于DEPC处理的三蒸水中以溶解RNA,分装,-20℃冻存。

  (1)制平板胶:1.2%琼脂糖煮沸,冷却至60℃,加入10×MOPS缓冲液及甲醛溶液,使三者的比例为3.5:1.1:1,或三者的终浓度分别为1.2%、1及10%,于室温放置30分钟或更长时间,使胶凝固。

  (3)加入2ul DEPC处理的加样缓冲液上样,进行电泳,5V/cm电压,3小时直到溴酚兰至胶的中部,可用已知RNA标本作分子量标准品,如28srRNA或9S兔β-球蛋白mRNA。

  (4)电泳完毕,取出凝胶,浸泡在溴化乙锭溶液中(终浓度0.5g/L)染色30~45分钟,紫外透射仪观察分子量大小。

  本技术可用于基因组DNA特定序列定位,尤其可分析某些基因的限制性内切酶长度多态性,对遗传性疾病的早期基因诊断、产前诊断或基因变异等方面的研究有应用价值,其过程包括:样品DNA内切酶水解、水解片断的琼脂糖凝胶电泳分离、分离后水解片断的转移(固定)、特异性DNA片断的分子杂交及放射自显影。

  限制性内切酶(RE)可裂解双链DNA,每种酶其特点是具有高度特异性的DNA裂解点和不同电离子强度的特殊反应条件。不同产品其反应条件不同,应根据说明书操作。单位(U)RE活性是在37℃ 1小时内能将1μg DNA所有特异性位点切断的酶用量。若用两种以上不同的内切酶,要注意RE的最适盐浓度,要由低向高逐级添加适量盐逐个进行DNA切割。

  (2)加入2mL 10×限制酶缓冲液,根据厂家建议的盐浓度选择不同的缓冲液。

  (4)37℃温育适当时间,时间需先进行预试验,摸索所需消化的时间,通常用琼脂糖凝胶电泳鉴定,酶解充分,各片断分子量从大到小分布均匀。

  (6)消化后的DNA直接进行琼脂糖电泳,方法同前,可用于分析或Southern Blot。

  将经电泳走在琼脂糖中的DNA变性、中和后,以毛细管作用在高盐缓冲液中转移至硝酸纤维膜上,再用放射性探针检测与之杂交的DNA。

  (1)内切酶消化的DNA,总体积为50uL,加入10uL加样缓冲液进行12-24琼脂糖电泳。

  (5)剪3~5层滤纸,大小每边比硝酸纤维膜小7mm,再剪一张滤纸,比胶的宽度长30~40cm,在一盘中加入数百毫升20×SSC,盘上搭一块玻璃,滤纸可从玻璃双侧浸到盘中的溶液。

  (6)逐层放置滤纸、凝胶、硝酸纤维素膜,其上再铺滤纸及吸水纸,并加以重物,胶和硝酸纤维膜之间不可有气泡,转移24~36小时

  (7)取出该膜,用圆珠笔标记方向,放入2×SSC中5分钟,用滤纸吸干,80℃烘烤2小时。

  (8)将该转移膜放在塑料袋中,加入6~10mL预杂交液,排出气泡,封口,42℃ 3小时或过夜。

  (9)将标记的DNA探针煮沸5分钟,立即冷却,加入杂交液中,浓度为5×105 CPM/ML。

  结果分析:此杂交技术可以对基因结构进行分析。杂交阴性带的大小,分布规律及根据带条信号强度测量其含量。

  此法是将RNA分子在变性琼脂糖凝胶中可相互分离,随后将RNA转移至硝酸纤维素滤膜上,用放射性标记的探针进行DNA-RNA杂交,此法是研究RNA(特别是mRNA)的主要方法之一,可测量RNA的含量和大小。

  Northern 杂交液:500mL预杂交液加入标记探针及10%磷酸葡聚糖。

  (2)待溴酚兰走至胶的中部时,用水清洗胶数次,放置于500mL 10×SSC中浸泡45分钟,轻轻摇动。

  (3)测量胶的大小,按下列顺序,从下向上为①横跨玻璃双侧的滤纸,双边可浸至20×SSC溶液;②胶;③硝酸纤维素滤膜;④亲和层吸纸;⑤吸水纸;⑥重物、转移4~6小时。

  (6)将已标记的探针煮沸,立即冷却,加入6~10mL Northern杂交液。

  (9)曝光于X光片暗盒中放射自显影1天。显影,定影,根据自显影条带的位置判定特定片断的位置和顺序,也可测含量。

  此项技术是一种蛋白质的固定和分析技术,是将已用聚丙烯酰胺凝胶或其它凝胶或电泳分离的蛋白质转移到硝酸纤维滤膜上,固定在滤膜上的蛋白质成分仍保留抗原活性及与其它大分子特异性结合的能力,所以能与特异性抗体或核酸结合,其程序Sonthern Blot相似,故称为Western Blot,第一抗体与膜上特异抗原结合后,再用标记的二抗(同位素或非同位素的酶)来检测,此方法可检测1ng抗原蛋白。

  (2)用一张滤纸,剪成与胶同样大小,在转移电泳缓冲液中预湿,放在Scotch-Brit Pad上,在胶的阴性端放上滤纸,胶的表面用该缓冲液浸湿,排出所有气泡。

  (3)在胶的阳极面放置同样大小浸湿的硝酸纤维素膜,排出气泡,再在滤膜的阳极端放置一张滤纸,排出气泡,再放一个Scotch-Brit Pad。

  (4)将以上“三明治”样装置放入一个塑料支撑物中间,将支撑物放入电转移装置中,加入电转移缓冲液。

  (5)接通电源:使胶上的蛋白转移到硝酸纤维素膜上,电压为14V 4℃转移4小时或过夜。

  (6)将滤膜放入丽春红S溶液中5分钟,蛋白染色水中脱色2分钟,照像,用印度墨水将分子量标准染色,在水中完全脱色。

  (7)将滤膜放在塑料袋中,每3张加入5mL封闭缓冲液(1克速溶去脂奶粉溶于100ml PBS中),封闭特异性抗体结合位点,室温1h,摇动,倒出封闭缓冲液。

  (8)在封闭缓冲液中稀释第一抗体,加入后室温放置1小时,将滤膜转到塑料盒中,用200mL PBS洗四次,摇动。

  (10)将滤膜放在100mL新配制的DAB底物溶液中,大约2~3分钟就可显色,用水冲洗终止反应、照像。

  结果分析:分析阳性(显色)条带的分子量大小,而且根据信号(颜色)强弱分析蛋白表达量。

  原位杂交(ISH)是一种可在细胞涂片、组织切片以及分裂中期染色体带中检测DNA或RNA的技术,此方法原理是由DNA或RNA的序列与互补的标记单链DNA/RNA探针结合形成标记的双链杂交分子,本技术可对组织细胞原位的待测核酸分子进行定性,定量及定位分析。在细胞分化调节、基因定位、肿瘤遗传学、分子病理学、病毒学等领域得到广泛应用。经典的原位杂交技术包括载玻片处理,组织细胞的固定,探针的制备或选购,原位杂交,洗涤以及检测,其中探针制备技术不属于本章专业技术,故不作具体评叙,略交待制备使用原则。本章节主要介绍培养细胞的原位杂交技术。

  探针为RNA或双链、单链DNA,双链探针较单链探针有很多缺点,探针必须变性、复性,降低了探针杂交效率,双链探针在溶液中形成长的链状结构倾向,限制了它的组织穿透能力。适用于基因组DNA杂交。由于原位杂交的探针将与高密度的细胞融合,因此,需要减短探针的长度或增加探针的浓度,但是过高浓度的探针往往会增加非特异性结合,因此每种探针应选择适当的浓度。

  探针的获得常采用随机引物延伸法的PCR合成和扩增,可获大量的DNA探针,或利用带有噬菌体强启动子多克隆位点的质粒载体来合成RMA探针,也可利用质粒菌扩增质粒,经酶切后纯化的基因片断,均可以获得制备探针原料。这些探针可以用同位素标记,也可以用非同位素标记,即光敏生物标记或地高辛配基标记于脱氧脲嘧啶三磷酸核苷(dUTP)上形成的地高辛-dUTP,可通过随机引物或缺口平移法与探针的核酸分子相连,构成地高辛一配基标记的核酸探针。比探针可用抗地高辛抗体偶联酶或荧光素通过松体结合和底物显色或产生荧光来检测。

  (1)用0.1mol/L HCL洗载玻片20分钟,再用无水乙醇洗数次使其干燥。

  3、对于盖玻片:于0.1mol/L HCL中浸泡20分钟,用无水乙醇洗,干燥后用二甲基氯化硅硅化,180℃烤2小时。

  理想的细胞固定过程应该保护细胞形态,同时确保目的基因DNA或RNA序列暴露。对于RNA-RNA原位杂交有效的固定剂是4%多聚甲醛和PLPD(磷酸缓冲液PBS、赖氨酸、过碘酸盐及重酪酸盐)。

  (1)用含有0.02%EDTA的PBS洗涤细胞,于0.1%胰蛋白酶消化,收获细胞计数,涂载玻片上。

  (2)若检测RNA,固定于4%多聚甲醛pH7.0,在4℃下放60分钟,PBS洗5分钟,系列乙醇脱水干燥,-20℃保存。

  注意:对于DNA-DNA原位杂交多聚甲醛或福尔马林均可,但对于地高辛检测法必须用4%多聚甲醛,固定至少16小时,而且用蛋白酶K处理,这样可明显减少背景染色。

  原位杂交与盐浓度、温度、甲酰胺浓度、pH等有关,DNA复性的温度是16~32℃,DNA-RNA原位杂交,25℃最佳,RNA-DNA杂交,可用较高温度,在pH5~9范围内复性率基本上与pH无关。最好选用温和的碱性条件。甲酰胺有机溶剂可降低双链核酸的稳定性,可避免杂交过程中处于过高的温度,防止高温破坏组织。

  同位素标记的DNA探针,敏感性高,但要注意非特异结合,如35S标记探针在杂交前,用未经标记的dUTP预杂交,可减少非特异,可获较好的细胞内定位,此外还常用3H或125I标记探针,但3H放射线天曝光,不太理想,方法如下:

  (1)取已形成单层的细胞的盖玻片,悬浮细胞可采用离心法,将细胞粘附到涂有明胶的载玻片上。组织印片,冰冻切片等标本。

  (3)将细胞片标本浸入70%乙醇脱水,空气干燥,这时培养细胞盖玻片应该用中性树胶固定于载玻片上,注意细胞面向上。

  (5)直接向固定的细胞面滴加5mL含探针杂交液,然后用16mm盖玻片覆盖,其边缘用橡胶液封闭。

  (6)43℃恒温水浴箱内培养18小时,此间保持箱内高湿度,防止因盖玻片封闭不严导致杂交缓冲液干涸。

  (7)反应结束后,将玻片置于冰块上,用镊子小心剥下盖玻片周边的橡胶,将载玻片浸入垂直2×SSC溶液中,使盖玻片脱落。

  (8)将载玻片放入湿盒中,加2×SSC溶液浸没玻片,加盖玻片并用胶带封闭湿盒。然后,将湿盒移入水浴箱中53℃处理30分钟。

  (11)将干燥后的干燥标本浸入新配制的核4乳胶液(核4乳胶液蒸馏水=1:1),垂直取出玻片,用滤纸擦去背面多余胶,室温干燥5小时(在暗室中进行)。

  (12)用黑纸包裹标本放在4℃冰箱曝光(3H标记的探针通常需2~4周,有时需长达100天,可造成高背景,而不理想)。

  结果分析:镜下观察,如需定量,可在镜下计数银颗粒或拍摄显微照片,用图象分析仪进行灰度分析。

  RNA探针容易制备,合成率较高,成本低,易纯化,可提高检测敏感性。DNA-RNA、RNA-RNA杂交比DNA-DNA杂交稳定,能适应更多的条件。

  (2)将RNA标记探针溶于杂交缓冲液中(5×107CPM/ml放射强度)。

  (3)每张载玻片上滴加杂交液,使每张载玻片探针总量为2×105CPM,用一硅化的盖玻片盖住,封以不透性矿物油,在利于探针的温度下(常为42℃)杂交7~18小时。

  (4)用氯仿洗数次,去除矿物油,室温下使盖玻片在2×SSC液中滑落,再滴加50%~70%去离子甲酰胺,0.1×SSC液,杂交温度下60分钟,室温2×SSC洗5分钟,用50μg/mL RNaseA在2×SSC中消化去除单链RNA,再滴加50%~70%去离子甲酰胺,0.1×SSC,室温15分钟,室温下用0.1×SSC洗5分钟。

  (5)将切片脱水,浸入由1%甘油稀释的放射自显影乳剂(1:1)中,放入暗盒中,在有硅胶干燥剂存在下-70℃,存放5天(或者曝光于X光胶片24~48小时),随后浸于液体乳剂。

  放射性同位素标记探针缺点是有放射损伤,易污染环境,需特殊防护和实验条件,有半衰期受限、标记不稳定及曝光时间长。若改用生物素、乙酰氨基、荧光或地高辛标记可避免,其中以地高辛标记探针最敏感,随机引物标记地高辛,其标记率很高,此探针用于原位杂交可获高敏感性,好的细胞定位以及低背景。非同位标记探针还可以通过双标记原位杂交法,同时测多条DNA序列。

  ②将140ng/mL地高辛标记的探针加到杂交缓冲液中,每张滴加50μL杂交缓冲液,用盖玻片盖住,四周封以树胶。

  ③将目的DNA和DNA探针放入90℃,进行变性10分钟,双链打开,42℃,在潮湿环境中杂交16小时。

  3) 滴加1:5000标有碱性磷酸酶或辣根过氧化物酶的地高辛抗体,在装有缓冲液I的湿盒中温育20分钟。

  (1)用不同浓度和不同温度的盐溶液洗涤是为了去除探针与不完全同源序列杂交,减少非特异性显色,其原则盐浓度由高到低,温度由低到高洗涤,洗涤过程中切勿使切片干燥。

  (2)应该有阳性和阴性对照,阳性对照:用该探针与已知含互补序列的组织细胞标本进行杂交。阴性对照:①应用RNA酶或DNA酶去除目的序列;②使用未标记探针;③不加核酸探针进行杂交(空白对照);④用不含探针DNA的无关质粒DNA替代探针进行杂交;⑤同义RNA(Sense probe)进行杂交。

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